IMOBILIZAÇÃO DA LIPASE DE Aspergillus japonicus EM ARGILA MONTMORILONITA KSF POR ADSORÇÃO FÍSICA: DETERMINAÇÃO DOS VALORES ÓTIMOS DE pH E TEMPERATURA

IMOBILIZAÇÃO DA LIPASE DE Aspergillus japonicus EM ARGILA MONTMORILONITA KSF POR ADSORÇÃO FÍSICA: DETERMINAÇÃO DOS VALORES ÓTIMOS DE pH E TEMPERATURA

FERRARI, B. R.; SCHWANKE, A. J.; PERGHER, S.; EBINUMA, V. C. S.; PAULA, A. V.

Artigo Completo:

A aplicação de enzimas em diferentes sínteses, visando à obtenção de produtos com alto valor agregado, é um dos campos mais promissores dentro da tecnologia enzimática. Nesse sentido, a exploração de novas técnicas para produção de enzimas leva à manipulação de diferentes microrganismos. Dentre as enzimas disponíveis, as lipases são capazes de catalisar a hidrólise total ou parcial de triacilglicerídeos, atuando sobre as ligações ésteres presentes na molécula e promovendo a liberação de ácidos graxos e glicerol. Neste contexto, o objetivo do presente trabalho foi produzir, caracterizar e imobilizar lipases por cultivo submerso de cepas de Aspergillus japonicus DPUA1727. Após a produção da enzima obteve-se o filtrado enzimático, o qual foi liofilizado. O material liofilizado foi imobilizado por adsorção física em argila montmorilonita KSF e a enzima na forma livre e imobilizada foi caracterizada em relação ao pH e a temperatura ótima de atuação. Os resultados de pH ótimo e temperatura ótima foram os mesmos, 8,0 e 30°C, respectivamente.

A aplicação de enzimas em diferentes sínteses, visando à obtenção de produtos com alto valor agregado, é um dos campos mais promissores dentro da tecnologia enzimática. Nesse sentido, a exploração de novas técnicas para produção de enzimas leva à manipulação de diferentes microrganismos. Dentre as enzimas disponíveis, as lipases são capazes de catalisar a hidrólise total ou parcial de triacilglicerídeos, atuando sobre as ligações ésteres presentes na molécula e promovendo a liberação de ácidos graxos e glicerol. Neste contexto, o objetivo do presente trabalho foi produzir, caracterizar e imobilizar lipases por cultivo submerso de cepas de Aspergillus japonicus DPUA1727. Após a produção da enzima obteve-se o filtrado enzimático, o qual foi liofilizado. O material liofilizado foi imobilizado por adsorção física em argila montmorilonita KSF e a enzima na forma livre e imobilizada foi caracterizada em relação ao pH e a temperatura ótima de atuação. Os resultados de pH ótimo e temperatura ótima foram os mesmos, 8,0 e 30°C, respectivamente.

Palavras-chave:

DOI: 10.5151/chemeng-cobeqic2017-315

Referências bibliográficas

• [1] BRADFORD, M. Analytical Biochemistry. 72, 248-254, 1976.
• [2] COLLA, L.M.; FICANHA, A.M.M.; RIZZARDI, J.; BERTOLIN, T.E.; REINEHR, C.O.; COSTA, J.A.V. Production and characterization of lipases by to new isolates of Aspergillus through solid-state and submerged fermentation. BioMed Research International, v. 2015, article ID 725959, 9 pages. 2015.
• [3] CONTESINI, J. F.; LOPES, B. D.; MACEDO. A, G.; NASCIMENTO, G. M.;
• [4] CARVALHO, O. P. Aspergillus sp. lipase: Potencial biocatalyst for industrial use. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, v. 67, p. 163 – 171, 2010.
• [5] FERRARI, B. R.; PAULA, A. V.; EBINUMA, V. C. S. Potencial lipolítico do fungo filamentoso Aspergillus japonicus: caracterização e imobilização da lipase. Processo FAPESP 2015/24564-6. Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho”, Araraquara, 2016.
• [6] FERREIRA-DIAS, S.; SANDOVAL, G.; PLOU, F.; VALERO, F. The potential use of lipases in the production of fatty acid derivatives for the food and nutraceutical industries. Eletronic Journal of Biotechnology, v. 17, nº 3, p. 1-38, 2013.
• [7] GUISAN, J. M. “Immobilization of enzymes and cells”. 2nd ed., Institute of Catalysis, CSIC Campus UAM–Cantoblanco- Madrid, Spain, 2006.
• [8] HASAN, F.; SHAH, A. A.; HAMEED, A. Methods for detection and characterization of lipases: A comprehensive review. Biotechnology Advances, v. 27, nº 6, p. 782-798, 2009.
• [9] MHETRAS, N.C.; PATIL, S.; GOKHALE, D. Lipase of Aspergillus niger NCIM 1207:
• [10] A Potential Biocatalyst for Synthesis of Isoamyl Acetate. Indian Journal of Microbiology, v. 50, p. 432, 2010.
• [11] NUNES, P.A.; PIRES-CABRAL, P.; FERREIRA-DIAS, S. Production of olive oil enriched with medium chain fatty acids catalysed by commercial immobilised lipases. Food Chemistry, v. 127, p. 993-998, 2011.
• [12] PADILHA, G.S.; FERREIRA, J.F.; CASTIGLIONI G.L.; ALEGRE, R.M.;
• [13] TAMBOURGI, E.B. Avaliação da lipase extracelular de Pseudomonas cepacia para purificação em sistema bifásico aquoso. Ciência Tecnologia de Alimentos, v.31, n.1, p. 16-22, 2011.
• [14] PAULA, A. V. Reestruturação da gordura de leite por interesterificação enzimática empregando lipase imobilizada: otimização das condições reacionais e operacionais. 2011. 212 p. Tese (Doutorado em Ciências) - Escola de Engenharia de Lorena, Universidade de São Paulo, Lorena/SP, 2012.
• [15] SUDBRACK, T.S. Imobilização de lipase em montmorilonita e aplicação em reações oleoquímicas. 2012. 66f. Dissertação (Mestrado em Química) - Instituto de Química, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Porto Alegre/RS, 2012.
• [16] VESCOVI, V.; KOPP, W.; GUISÁN, J. M.; GIORDANO, R. L. C.; MENDES, A. A.; TARDIOLI, P. W. Improved catalytic properties of Candida antarctica lipase Bmultiattached on tailor-made hydrophobic silica containing octyland multifunctional aminoglutaraldehyde spacer arms. Process Biochemistry. 2016.

Como citar:

FERRARI, B. R.; SCHWANKE, A. J.; PERGHER, S.; EBINUMA, V. C. S.; PAULA, A. V.; "IMOBILIZAÇÃO DA LIPASE DE Aspergillus japonicus EM ARGILA MONTMORILONITA KSF POR ADSORÇÃO FÍSICA: DETERMINAÇÃO DOS VALORES ÓTIMOS DE pH E TEMPERATURA", p-1783-1788. In: Anais do XII Congresso Brasileiro de Engenharia Química em Iniciação Científica [=Blucher Chemical Engineering Proceedings, v. 1, n.4]. ISSN Impresso: 2446-8711. São Paulo: Blucher, 2017.
ISSN 23591757, DOI 10.5151/chemeng-cobeqic2017-315