PRODUÇÃO DE ENZIMAS POR FERMENTAÇÃO EM ESTADO SÓLIDO POR METARHIZIUM ANISOPLIAE

PRODUÇÃO DE ENZIMAS POR FERMENTAÇÃO EM ESTADO SÓLIDO POR METARHIZIUM ANISOPLIAE

SPANNEMBERG, S. S.; AITA, B. C.; KUHN, R. C.; MAZUTTI, M. A.

Pôster:

O objetivo do presente trabalho foi avaliar o processo de fermentação emestado sólido para a produção enzimática de quitinase, β1,3-glucanase, endocelulase eexocelulase a partir de Metarhizium anisopliae. Neste sentido, utilizou-se oplanejamento experimental Plackett Burman (PB 12) para avaliar o efeito da umidade(60-80%), concentração de água de maceração de milho (AMM, 0-5%, v/m),concentração de farelo de soja (0-5%, m/m) e concentração de inóculo (10-30%, v/m).A atividade enzimática foi determinada a partir do método DNS. Assim, verificou-seque a condição fermentativa significativa de maior atividade enzimática foi à 60% deumidade, 0% de AMM (v/m), 0% de farelo de soja (m/m). A concentração de inóculonão foi estatisticamente significante nos ensaios realizados. Nessa condição, a atividadeenzimática de quitinase, β1,3-glucanase, endocelulase e exocelulase foi em média de14,02, 13,04 ,20,10 e 26,06 µmol/min,g respectivamente.

O objetivo do presente trabalho foi avaliar o processo de fermentação emestado sólido para a produção enzimática de quitinase, β1,3-glucanase, endocelulase eexocelulase a partir de Metarhizium anisopliae. Neste sentido, utilizou-se oplanejamento experimental Plackett Burman (PB 12) para avaliar o efeito da umidade(60-80%), concentração de água de maceração de milho (AMM, 0-5%, v/m),concentração de farelo de soja (0-5%, m/m) e concentração de inóculo (10-30%, v/m).A atividade enzimática foi determinada a partir do método DNS. Assim, verificou-seque a condição fermentativa significativa de maior atividade enzimática foi à 60% deumidade, 0% de AMM (v/m), 0% de farelo de soja (m/m). A concentração de inóculonão foi estatisticamente significante nos ensaios realizados. Nessa condição, a atividadeenzimática de quitinase, β1,3-glucanase, endocelulase e exocelulase foi em média de14,02, 13,04 ,20,10 e 26,06 µmol/min,g respectivamente.

Palavras-chave:

DOI: 10.5151/cobeq2018-PT.0610

Referências bibliográficas

• [1] ASADI SZ, DARANI KK, NIKOOPOUR H, BAKHODA H. Evaluation of the effect of process variables on the fatty acid profile of single cell oil produced by Mortierella using solid-state fermentation. Crit Rev Biotechnol, v. 35, p. 94–102, 2015. BEHERAA SS, RAY RC. Solid state fermentation for production of microbial cellulases: Recent advances and improvement strategies. Int J Biol Macromol, v. 86, p. 656–669, 2016. CHAVAN SB, DESHPANDE MV. Chitinolytic Enzymes: An Appraisal as a Product of Commercial Potential. Biotechnol Prog, Vol. 29, 2013. COUTO SR, SANROMÁN MA. Application of solid-state fermentation to food industry—A review. J Food Eng, v. 76, p. 291–302, 2006. FARINAS, C. S. Developments in solid-state fermentation for the production of biomass-degrading enzymes for the bioenergy sector. Renew Sust Energ Rev, v.52, p. 179–188, 2015. MILLER GL. Use of Dinitrosalicylic Acid Reagent for Determination of Reducing Sugar. Anal Chem v. 31, p. 426-428, 1959. PANDEY A. Solid-state fermentation. Biochem Eng J, v. 13, p. 81–84, 2003. RUSTIGUEL CB, JORGE JA, GUIMARÃES LHZ. Optimization of the Chitinase Production by Different Metarhizium anisopliae Strains under Solid-State Fermentation with Silkworm Chrysalis as Substrate Using CCRD. Adv Microbiol, v. 2, p. 268-276, 2012. SINGHANIA RR, PATEL AK, SOCCOL CR, PANDEY A. Recent advances in solid-state fermentation. Biochem Eng J, v. 44, p. 13–18, 2009.

Como citar:

SPANNEMBERG, S. S. ; AITA, B. C. ; KUHN, R. C. ; MAZUTTI, M. A. ; "PRODUÇÃO DE ENZIMAS POR FERMENTAÇÃO EM ESTADO SÓLIDO POR METARHIZIUM ANISOPLIAE", p-2307-2310. In: . São Paulo: Blucher, 2018.
ISSN 23591757, DOI 10.5151/cobeq2018-PT.0610